Реакція аглютинації: еволюція методичних підходів та сфер застосування
Анотація
Одним з найважливіших розділів у медичній та ветеринарній мікробіології є діагностика інфекційних захворювань із застосуванням імунологічних реакцій, де використовується специфічна імунна реакція між антигенами та антитілами з утворенням комплексу «антиген-антитіло». Таку взаємодію використовували спочатку в реакціях аглютинації, преципітації, нейтралізації та зв’язування комплементу, а пізніше на їх основі були розроблені сучасні реакції. В основі усіх серологічних реакцій лежить взаємодія антигенів та антитіл, але відрізняються види антигенів, характер взаємодії антитіл з антигенами, кількість компонентів, методики постановки реакцій та способи їх обліку. Серед арсеналу діагностичних методів реакція аглютинації стала універсальним інструментом для ідентифікації антигенів та антитіл. У цій статті ми спробували проаналізувати принципи, застосування та переваги різних варіантів реакції аглютинації, підкреслюючи її значення в клінічних та дослідницьких умовах на основі даних зарубіжної наукової літератури. Популярність аглютинації зумовлена її численними перевагами. Найважливішими перевагами є простота і швидкість реакції. Крім того, більшість реакцій аглютинації може бути виконана з використанням базового недорогого лабораторного обладнання. При порівнянні з найсучаснішими методами більшість тестів аглютинації є високоспецифічними та чутливими, забезпечуючи точні результати навіть при низьких концентраціях аналіту. Ці якості сприяють її широкому використанню в клінічних умовах та наукових дослідженнях у галузі мікробіології та імунології. Вона дозволяє швидко ідентифікувати та диференціювати види мікробних антигенів. Це допомагає в епідеміологічних дослідженнях. З розвитком технологій очікуються удосконалення реакцій аглютинації. Дослідники вивчають інтеграцію нанотехнологій та методів молекулярної біології для підвищення чутливості та специфічності аналізу. Крім того, докладаються зусилля для розширення спектру доступних реагентів, щоб охопити ширший спектр патогенів та антигенів. Ці досягнення мають потенціал для подальшого покращення діагностичних можливостей реакцій аглютинації, що робить їх ще більш незамінним інструментом у медичних та біологічних дослідженнях. Реакції аглютинації зарекомендували себе як універсальний та надійний діагностичний інструмент як у клінічних, так і в дослідницьких умовах.
Завантаження
Посилання
Al Dahouk, S., Tomaso, H., Nöckler, K., Neubauer, H., & Frangoulidis, D. (2003). Laboratory-based diagnosis of brucellosis – a review of the literature. Part I: Techniques for direct detection and identification of Brucella spp. Journal of Clinical Laboratory Analysis, 49(9-10), 487–505.
Albert, I. P., Kato, C. D., Ikwap, K., Kakooza, S., Ngolobe, B., Ndoboli, D., & Tumwine, G. (2018). Comparison of rose bengal plate test, serum agglutination test, and indirect enzyme-linked immunosorbent assay in brucellosis detection for human and goat samples. International Journal of One Health, 4, 35+.
Al-Tamimi, M., Altarawneh, S., Mustafa, M. A., El-sallaq, M., & Shihab P. (2024). Quantitative and equipment-free paper-based agglutination assay of bacterial cells. Royal Society of Cemistry Advances, 14, 20516–20528. https://doi.org/10.1039/D4RA03001J
Barkay, O., Karakeçili, F., Binay, U. D., & Akyüz, S. (2024). Determining diagnostic sensitivity: a comparison of rose bengal test, coombs gel test, elisa and bacterial culture in brucellosis diagnosis – analyzing clinical effectiveness in light of inflammatory markers. Diagnostics (Basel), 14(14), 1546. https://doi.org/10.3390/diagnostics14141546
Bhaskar S., Banavaliker J. N., & Hanif, M. (2003). Large-scale validation of a latex agglutination test for diagnosis of tuberculosis. FEMS Immunology and Medical Microbiology, 39(3), 235–9. https://doi:10.1016/S0928-8244(03)00232-3
Bozdĕch, V. (1979). Latex reaction with toxoplasma antigen. Angewandte Parasitologie, 20(1), 1-8.
Brandão, A. P., Camargo, E. D., da Silva, E. D., Silva, M. V., & Abrão, R. V. (1998). Macroscopic agglutination test for rapid diagnosis of human leptospirosis. Journal of Clinical Microbiology, 36(11), 3138–42. https://doi:10.1128/JCM.36.11.3138-3142.1998
Büscher, P., Lejon V., Magnus, E., & Van Meirvenne, N. (1999). Improved latex agglutination test for detection of antibodies in serum and cerebrospinal fluid of Trypanosoma brucei gambiense infected patients. Acta Tropica, 73(1), 11–20. https://doi.org/10.1016/S0001-706X(99)00009-1
Carlier, Y., & Wery, M. (1983). Current methods of immunologic diagnosis in parasitology. Annales de Biologie Clinique, 41(6), 435–444.
Chaĭka, N. A. (1982). Use of the latex agglutination test for the diagnosis of parasitic disease (review of the literature). Meditsinskaia Parazitologiia i Parazitarnye Bolezni, 60(2), 65–72.
Charong, N., Kooltheat, N., & Plyduang, T. (2021). High-sensitivity detection of clinically significant red blood cell antibodies by the column agglutination technique. Advances in Clinical and Experimental Medicine, 30(11), 1205–1214. DOI: https://doi.org/10.17219/acem/140317
Chen, D. P., Wu, P. Y., & Lin, Y. H. (2023). Irregular Antibody Screening Using a Microdroplet Platform Biosensors (Basel), 13(9), 869. https://doi.org/10.3390/bios13090869
Chen, D.-P., Chen, C., Wu, P.-Y., Lin, Y.-H., Lin, W.-T., & Yan, Y.-L. (2021). Micro-droplet platform for exploring the mechanism of mixed field agglutination in b3 subtype. Biosensors, 11(8), 276. https://doi.org/10.3390/bios11080276
Chima, J. C., & Onoviran, O. (1982). A passive hemagglutination test for detection of antibodies against Mycoplasma mycoides subsp. mycoides using glutaraldehyde-fixed sheep erythrocytes. Veterinary Microbiology, 7(4), 343–9. https://doi.org/10.1016/0378-1135(82)90014-1
Cho, D., Lee, J. S., Yazer, M. H., Song, J. W., Shin, M. G., Shin, J. H., Suh, S. P., Jeon, M. J., Kim, J. Y., Park, J. T., & Ryang, D. W. (2006). Chimerism and mosaicism are important causes of ABO phenotype and genotype discrepancies. Immunohematology, 22(4), 183–7.
Choi, E. K., Gatenby, P. A., McGill, N. W., Bateman, J. F., Cole, W. G., & York, J. R. (1988). Autoantibodies to type II collagen: occurrence in rheumatoid arthritis, other arthritides, autoimmune connective tissue diseases, and chronic inflammatory syndromes. Annals of the Rheumatic Diseases, 47(4), 313–22. https://doi.org/10.1136/ard.47.4.313
Coombs, R. R. A. (1998). Historical note: past, present and future of the antiglobulin test. Vox Sanguinis. The International Journal of Transfusion Medicine, 74, 67–73. https://doi.org/10.1046/j.1423-0410.1998.7420067.x
Coombs, R. R. A., & Stoker M. G. P. (1951). Detection of Q fever antibodies by the antiglobulin sensitisation test. Lancet, 2(6671), 15–17. https://doi.org/10.1016/s0140-6736(51)93452-6
Copur B., & Pasa O. (2022). The role of the serum tube agglutination test in the monitoring of human brucellosis: evaluation of post-treatment SAT titers. Revista Da Associacao Medica Brasileira, 68(9), 1234–1239. https://doi.org/10.1590/1806-9282.20220269
Corbel, M. J., & Cullen, G. A. (1970). Differentiation of the serologicl response to Yersinia enterocolitica and Brucella abortus in cattle. The Journal of Hygiene (Lond), 68(4), 519–30. https://doi.org/10.1017/s0022172400042455
Cranage, M. P., Gurner, B. W., & Coombs, R. R. (1983). Glutaraldehyde stabilisation of antibody-linked erythrocytes for use in reverse passive and related haemagglutination assays. Journal of Immunological Methods, 64(1–2), 7–16. https://doi.org/10.1016/0022-1759(83)90378-2
De La Fuente, L., Anda, P., & Rodriguez, I. (1989). Evaluation of a latex agglutination test for Rickettsia conorii antibodies in seropositive patients. Journal of Medical Microbiology, 28(1), 69–72. https://doi.org/10.1099/00222615-28-1-69
Dhanalakshmi, S., Meenachi, C., & Parija, S. C. (2016). Indirect haemagglutination test in comparison with ELISA for detection of antibodies against invasive amoebiasis. Journal of Clinical and Diagnostic Research, 10(8), DC05–8. https://doi.org/10.7860/jcdr/2016/21566.8326
Díaz, R., Casanova, A., Ariza, J., & Moriyón, I. (2011). The Rose Bengal Test in human brucellosis: a neglected test for the diagnosis of a neglected disease. PLOS Neglected Tropical Diseases, 5(4), e950. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0000950
Dumas, N., Kawai, K., Bessières, M. H., & Séguéla, J. P. (1983). Latex agglutination reaction for the diagnosis of toxoplasmosis. Annales de Biologie Clinique, 41(2), 145-150.
Ebrahimi Fana, S., Paknejad, M., & Aminian, M. (2021). Paper based analytical devices for blood grouping: a comprehensive review. Biomedical Microdevices, 23(3), 34. https://doi.org/10.1007/s10544-021-00569-w
Edwards, S., Chasey, D., Napthine, P., Banks, J., Hewitt-Taylor, C., & Cranage, M. P. (1987). A comparison of three rapid diagnostic methods for the detection of rotavirus infection in calves. Veterinary Microbioljgy, 13(1), 19–25. https://doi.org/10.1016/0378-1135(87)90094-0
El Harith, A., Osman, H. A., Mansour, D., Semiao-Santos, S. J., & Abass, E. (2025). Direct agglutination test: Evolution and significance as a simple and safe alternative to tissue aspiration procedures in the diagnosis of visceral leishmaniasis. PLoS One, 20(6): e0319118. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0319118
Flamm, H. (2009). 110 jahre agglutinationsreaktionen nach Gruber und Widal: die prioritätenstreite von pfeiffer, gruber und widal [100 years Gruber and Widal agglutination reactions: the priority dispute between Pfeiffer, Gruber and Widal]. Wiener klinische Wochenschrift, 121(11-12), 417–23. German. https://doi.org/10.1007/s00508-009-1192-9
Freeman, S., Clark, L., & Dumas, N. (1983). Evaluation of a latex agglutination test for detection of antibodies to rubella virus in selected sera. Journal of Clinical Microbiology, 18(1), 197–8. https://doi.org/10.1007/s00508-009-1192-9
Garg, S., Saini, N., Bedi, R. K., & Basu, S. (2017). Comparison of micro column technology with conventional tube methods for antibody detection. Journal of Laboratory Physicians, 9(2), 95-99. https://doi.org/10.4103/0974-2727.199627
Ghosh, S., Aggarwal, K., U, V. T., Nguyen, T., Han, J., & Ahn, C. H. (2020). A new microchannel capillary flow assay (MCFA) platform with lyophilized chemiluminescence reagents for a smartphone-based POCT detecting malaria. Microsystems & Nanoengineering, 6, 5. https://doi.org/10.1038/s41378-019-0108-8
Guedes, I. B., Souza, G. O., de Paula Castro, J. F., de Souza Filho, A. F., de Souza Rocha, K, Gomes, M. E. T., de Moraes, C. C. G., & Heinemann, M. B. (2019). Development of a pooled antigen for use in the macroscopic slide agglutination test (MSAT) to detect Sejroe serogroup exposure in cattle. The Journal of Microbiological Methods, 166, 105737. https://doi.org/10.1016/j.mimet.2019.105737
Hammond, G. W., Ahluwalia, G. S., & Hazelton P. R. (1984). Detection of human rotaviruses in fecal specimens by a commercial latex-agglutination test. The Journal of Infectious Diseases, 149(6), 1021. https://doi.org/10.1093/infdis/149.6.1021
Hampp, E. G. (1947). Bacteriologic investigations of the oral spirochetal flora in ulcerative stomatitis (Vincent's infection). American Journal of Orthodontics and Oral Surgery, 33(9), 666–674. https://doi.org/10.1016/0096-6347(47)90118-X
Hanafiah, M., Sutriana, A., Helmi, T. Z., Fajriah, R., Mulyana, H., Sabila, C. N., & Dewantara, N. (2025). Epidemiological study of the serology and geographic distribution of abortion causative agents in aceh cows in Indonesia. Open Veterinary Journal, 15(4), 1702–1712. https://doi.org/10.5455/ovj.2025.v15.i4.22
Hossain, A., Bolbol, A. S., Chowdhury, M. N., & Bakir, T. M. (1989). Indirect haemagglutination (IHA) test in the serodiagnosis of amoebiasis. Journal of hygiene, epidemiology, microbiology, and immunology, 33(1), 91-7.
Huet, M., Cubizolles, M., & Buhot, A. (2018). Red blood cell agglutination for blood typing within passive microfluidic biochips. High-Throughput, 7(2), 10. https://doi.org/10.3390/ht7020010
Kaur, P. (2023). Latex agglutination: useful diagnostic tool in medicine and biology. Journal of Immunological Techniques and Infectious Diseases, 12(2).
Kerr, W. R., Payne, D. J., Robertson, L., & Coombs, R. R. (1967). Immunoglobulin class of Brucella antibodies in human sera. Immunology, 13(2), 223-5.
Khurana, S. K., Sehrawat, A., Tiwari, R., Prasad, M., Gulati, B., Shabbir, M. Z., Chhabra, R., Karthik, K., Patel, S.K., Pathak, M., Iqbal Yatoo, M., Gupta, V. K., Dhama, K., Sah, R., & Chaicumpa, W. (2021). Bovine brucellosis – a comprehensive review. "Vet Q"[jour], 41(1), 61–88. https://doi.org/10.1080/01652176.2020.1868616
Klimov, A., Balish, A., Veguilla, V., Sun, H., Schiffer, J., Lu, X., Katz, J. M., & Hancock, K. (2012). Influenza virus titration, antigenic characterization, and serological methods for antibody detection. Methods in Molecular Biology, 865, 25–51. https://doi.org/10.1007/978-1-61779-621-0_3
Koçman, E. E., Erensoy, M. S., Taşbakan, M., & Çiçeklioğlu, M. (2018). Comparison of standard agglutination tests, enzyme immunoassay, and Coombs gel test used in laboratory diagnosis of human brucellosis. Turkish journal of medical sciences, 48(1), 2–67. https://doi.org/10.3906/sag-1707-122
Kumar, A., Congeni, B. L., & Nankervis, G. A. (1980). Latex agglutination test for rapid detection of bacterial antigens in body fluids. Annals of Clinical & Laboratory Science, 10(5), 377–82.
León, P., de Ory, F., & Domingo, C. (1988). Evaluation of a latex agglutination test for screening antibodies to rubella virus. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases, 7, 196–199 (1988). https://doi.org/10.1007/bf01963081
Liana, D. D., Raguse, B., Gooding, J. J., & Chow, E. (2012). Recent advances in paper-based sensors. Sensors (Basel), 2(9), 11505–26. https://doi.org/10.3390/s120911505
Luo, Yi., Joung, H.-A., Esparza, S., & Rao, J. (2021). Quantitative particle agglutination assay for point-of-care testing using mobile holographic imaging and deep learning. Lab on a Chip. 21(18). https://doi.org/10.1039/D1LC00467K
Malik, R., McPetrie, R., Wigney, D. I., Craig, A. J. & Love, D. N. (1996). A latex cryptococcal antigen agglutination test for diagnosis and monitoring of therapy for cryptococcosis. Australian Veterinary Journal, 74(5), 358–364. https://doi.org/10.1111/j.1751-0813.1996.tb15445.x
Memish, M. Z. A., Almuneef, M., Mah, W., Qassem, L. A., & Osoba, A. O. (2018). Comparison of the brucella standard agglutination test with the ELISA IgG and IgM in patients with Brucella bacteremia. Diagnostic Microbiology and Infectious Disease, 44(2), 129–132. https://doi.org/10.1016/S0732-8893(02)00426-1
Mikailov, M. M., Gunashev, S. A., Yanikova, E. A., Halikov, A. A., & Bulashev, A. K. (2024). Indirect hemagglutination assay for diagnosing brucellosis: Past, present, and future. Veterinary World, 17(4), 811–819. https://doi.org/10.14202/vetworld.2024.811-819
Mittal, K. R., Higgins, R., & Lariviere, S. (1982). Evaluation of slide agglutination and ring precipitation tests for capsular serotyping of Haemophilus pleuropneumoniae. Journal of Clinical Microbiology, 15(6), 1019–23. https://doi.org/10.1128/jcm.15.6.1019-1023.1982
Mohan, A., Saxena, H. M., & Malhotra, P. (2016). A comparison of titers of anti-Brucella antibodies of naturally infected and healthy vaccinated cattle by standard tube agglutination test, microtiter plate agglutination test, indirect hemagglutination assay, and indirect enzyme-linked immunosorbent assay. Veterinary World, 9(7), 717–22. https://doi.org/10.14202/vetworld.2016.717-722
Mohseni, K., Mirnejad, R., Piranfar, V., & Mirkalantari, S. (2017). A comparative evaluation of ELISA, PCR, and serum agglutination tests for diagnosis of brucella using human serum. Iranian Journal of Pathology, 12(4), 371–376.
Najibullah, M., Lakshmanasami, G., Bharathy, S. & Kannan, P. (2014). Milk ring test for spot identification of brucella abortus infection in single cow herds. Journal of Advanced Veterinary and Animal Research. 1(2), 70–72.
Noble, P. S., & Baumgartner L. (1926). Studies on the dick test and agglutination reaction in a series of university students. The Journal of Immunology, 11(4), 323–330. https://doi.org/10.4049/jimmunol.11.4.323
Novaretti, M. C., Jens, E., Pagliarini, T., Bonifacio, S. L., Dorlhiac-Llacer, P. E., & Chamone, D. A. (2004). Comparison of conventional tube test technique and gel microcolumn assay for direct antiglobulin test: a large study. Journal of Clinical Laboratory Analysis, 18(5), 255–8. doi: https://doi.org/10.1002/jcla.20033
OIE. Bovine brucellosis. OIE Manual of Standards for Diagnostic Test and Vaccines (5th ed.). 2004.
Ortika, B. D., Habib, M., & Dunne, E. M. (2013). Production of latex agglutination reagents for pneumococcal serotyping. BMC Research Notes, 6, 49. https://doi.org/10.1186/1756-0500-6-49
Oyamada, Y., Ozuru, R., Masuzawa, T., Miyahara, S., Nikaido, Y., Obata, F., Saito, M., Villanueva, S. Y. A. M., & Fujii, J. (2021). A machine learning model of microscopic agglutination test for diagnosis of leptospirosis. PLoS One. 16(11), e0259907. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0259907
Plapp, F. V., Sinor, L. T., & Rachel, J. M. (1989). The evolution of pretransfusion testing: from agglutination to solid-phase red cell adherence tests. Critical Reviews in Clinical Laboratory Sciences, 27(2), 179–209. https://doi.org/10.3109/10408368909106593
Rahman, M. S., Jahan, N., Hossain, M. A., Uddin, M. J., Shil, N. K., Islam, K. B. M. S., Ahasan, Md. S., Rahman, A. K. M. A. & Song, H.-J. (2008). Tube agglutination test is superior than other serological tests for diagnosis of brucellosis in small ruminants. The Korean Journal of Veterinary Service, 31(4), 493–496.
Rai, G. P., Agarwal, G. S., & Venkateswaran, K. S. (1992). Indirect haemagglutination test for the serodiagnosis of brucellosis using stabilised sheep red blood cells. "Zentralbl Bakteriol"[jour], 277(2), 188–92. https://doi.org/10.1016/s0934-8840(11)80612-2
Ramos, C. A., Araújo, F. R., Santos, R. C., Melo, E. S., Sousa, L. C., Vidal, C. E., Guerra, N. R., & Ramos, R. A. (2014). Development and assessment of a latex agglutination test based on recombinant MSP5 to detect antibodies against Anaplasma marginale in cattle. The Brazilian Journal of Microbiology, 45(1), 199–204. https://doi.org/10.1590/s1517-83822014005000039
Ray, K., Grover, S. S., & Chowdhuri, A. N. (1984). Latex agglutination test for pertussis antibody status of children before & after vaccination. The Indian Journal of Medical Research, 79, 180–6.
Reis, KJ, Chachowski, R, Cupido, A, Davies, D, Jakway, J, & Setcavage, TM. (1993). Column agglutination technology: the antiglobulin test. "Transfusion"[jour], 33(8), 639–43. https://doi.org/10.1046/j.1537-2995.1993.33893342744.x.
Rowe, T., Abernathy, R. A., Hu-Primmer, J., Thompson, W. W., Lu, X., Lim, W., Fukuda, K., Cox, N. J., & Katz, J. M. (1999). Detection of antibody to avian influenza A (H5N1) virus in human serum by using a combination of serologic assays. Journal of Clinical Microbiology, 37(4), 937–43. https://doi.org/10.1128/jcm.37.4.937-943.1999
Sawierucha, J., Posset, M., Hähnel, V., Johnson, C. L., Hutchinson, J. A., & Ahrens, N. (2018). Comparison of two column agglutination tests for red blood cell antibody testing. PLoS One, 13(12), e0210099. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0210099
Senthilkumar, T., Subathra, M., Phil, M., Ramadass, P., & Ramaswamy, V. (2008). Rapid serodiagnosis of leptospirosis by latex agglutination test and flow-through assay. Indian Journal of Medical Microbiology, 26(1), 45–9. https://doi.org/10.4103/0255-0857.38857
Shariff, M., & Parija, S. C. (1993). Co-agglutination (Co-A) test for circulating antigen in hydatid disease. Journal of Medical Microbiology, 38(6), 391–4. https://doi.org/10.1099/00222615-38-6-391
Sharp O. T. (1956). The sensitized sheep cell agglutination reaction in rheumatoid arthritis. Annals of Internal Medicine, 44(6). https://doi.org/10.7326/0003-4819-44-6-1270
Shastry, S., Murugesan, M., & Bhat, S. (2014). Mixed field agglutination: Unusual causes and serological approach. Asian Journal of Transfusion Science, 8(1), 4. https://doi:10.4103/0973-6247.126680
Spada, E., Perego, R., Baggiani, L., & Proverbio, D. (2020). Comparison of conventional tube and gel-based agglutination tests for ab system blood typing in cat. Frontiers in Veterinary Science, 7, 312.https://doi.org/10.3389/fvets.2020.00312
Storch, G. A. & Myers, N. (1984). Latex-agglutination test for rubella antibody: validity of positive results assessed by response to immunization and comparison with other tests. The Journal of Infectious Diseases, 149(3), 459–464. https://doi.org/10.1093/infdis/149.3.459
Tanriverdi, E. S., Duman, Y., Bag, H. G. G., & Tekerekoglu M. S. (2021). Comparison the serologic tests used in the diagnosis of brucellosis; brucellacapt, brucella coombs gel, and brucella coombs tube agglutination tests, Annals of Medical Research, 28(2), 0347–0351.
Thornley, M. J., Lusher M., Scott M. L., Coombs R. R. A., Evans, R. T., Thomas, B. J. & Taylor-Robinson D. (1983). Characterization of a monoclonal antibody to the group antigen of Chlamydiaspp. and its use for antigen detection by reverse passive hemagglutination and indirect immunofluorescence. FEMS Microbiology Letters, 17(1-3), 45–49.
Unsworth, D. J., Kieffer, M., Holborow, E. J., Coombs, R. R., & Walker-Smith, J. A. (1981). IgA anti-gliadin antibodies in coeliac disease. Clinical & Experimental Immunology, 46(2), 286–93.
Van Aert, A., Brioen, P., Dekeyser, P., Uytterhaegen, L., Sijens, R. J., & Boeyé, A. (1984). A comparative study of ELISA and other methods for the detection of Brucella antibodies in bovine sera. Veterinary microbiology, 10(1), 13–21. DOI: https://doi.org/10.1016/0378-1135(84)90052-x
Watt, G., Alquiza, L. M., Padre I. P., Tuazon, M. L., & Laughlin, L. W. (1988). The rapid diagnosis of leptosirosis: a prospective comparison of the dot enzyme-linked immunosorbent assay and the genus-specific microscopic agglutination test at different stages of illness. The Journal of Infectious Diseases, 157(4), 840–842. https://doi.org/10.1093/infdis/157.4.840
Wijedoru, L., Mallett, S., & Parry, C. M. (2017). Rapid diagnostic tests for typhoid and paratyphoid (enteric) fever. The Cochrane Database of Systematic Reviews, 5(5), CD008892. doi: 10.1002/14651858.CD008892
Wilson, M. M., & Merrified, E. V. (1951). The antiglobulin (Coombs) test in brucellosis. Lancet, 2(6690), 913–4. https://doi.org/10.1016/s0140-6736(51)91875-2
Переглядів анотації: 18 Завантажень PDF: 9
