Характеристика остеомієліту щелеп у великої рогатої худоби

К. A. Syniahovska; D. V. Sarbash; D. V. Sliusarenko; O. O. Tsymerman; A. S. Kochevenko

doi:10.31890/vttp.2025.11.15

К. A. Syniahovska Державний біотехнологічний університет, м. Харків, Україна https://orcid.org/0000-0003-4482-4813
D. V. Sarbash Державний біотехнологічний університет, м. Харків, Україна https://orcid.org/0000-0003-0115-8259
D. V. Sliusarenko Державний біотехнологічний університет, м. Харків, Україна https://orcid.org/0000-0001-8214-0637
O. O. Tsymerman Державний біотехнологічний університет, м. Харків, Україна https://orcid.org/0000-0002-4663-0505
A. S. Kochevenko Державний біотехнологічний університет, м. Харків, Україна https://orcid.org/0000-0001-6884-8137

DOI: https://doi.org/10.31890/vttp.2025.11.15

Ключові слова: велика рогата худоба, остеомієліт щелепи, актиномікоз, бактеріологічні і рентгенологічні дослідження, пародонт, періодонтальна зв’язка, альвеола

Анотація

Представлено результати комплексного дослідження випадків остеомієліту щелеп великої рогатої худоби, проведеного впродовж 2014–2024 рр. на підставі клінічного огляду 1447 забійних корів віком від 2 до 14 рр. і 586 гол. великої рогатої худоби молочних комплексів віком від 2 до 4 рр. Остеомієліт щелеп було виявлено у 12 тварин (0,6 %): у 3 корів (25 %) ураження локалізувалося на верхній щелепі, у 9 (75 %) ‒ на нижній. Серед уражених тварин у 7 (58,3 %) було діагностовано бактеріальний одонтогенний остеомієліт, у 4 (33,3 %) ‒ актиномікозний, і в одному випадку (8,4 %) ‒ після травматичного перелому кістки нижньої щелепи. Усі випадки зареєстровані у віковій групі 3–4 роки. Дослідження етіологічних чинників виявили основні мікроорганізми, що спричиняли бактеріальний остеомієліт: Ps. aeruginosa, Strep. pyogenes, Corynebacterium, Staph. aureus, Bacteroides, Bac. subtilis, Bac. cereus, E. coli, Pr. vulgaris. Гістологічно виявлено дифузне запалення за типом флегмони, гнійний ексудат, некроз, остеолізис, а також порушення структур кісткової тканини. Актиномікозний тип остеомієліту характеризувався формуванням гранульом, некрозом кісток щелепи та утворенням гнійного ексудату з друзами грибів, ураженням пародонту та втратою зубів. Травматичний остеомієліт у поєднанні з переломом щелепи супроводжувався дифузним гнійним процесом, лімфаденітом і загальною інтоксикацією. Клінічно остеомієліт щелеп проявлялися болісністю при пальпації, деформацією кісток, слинотечею, гнильним запахом з ротової порожнини. Уражені зуби були рухливі, з дефектами, ясна ‒ гіперемійовані та з виразками. Рентгенологічно виявлено ділянки секвестрації, остеолізису, некрозу, порушення цілісності альвеолярних структур. Крім ознак місцевої патології остеомієліту спостерігали загальні зміни організму ‒ зниження апетиту, втрата жувальної функції, дистонія та атонія передшлунку, зменшення продуктивності та загальне виснаження тварин, системна інтоксикація, і як наслідок, потреба у вимушеному забої хворих тварин.

Завантаження

##plugins.generic.usageStats.noStats##

Посилання

1. Borsanelli, A.C., Gaetti-Jardim, Jr.E., Schweitzer, C.M., Viora, L., Busin, V., Riggio, M.P., & Dutra, I.S. (2015). Presence of Porphyromonas and Prevotella species in the oral microflora of cattle with periodontitis. Pesquisa Veterinaria Brasileira, 35(10), 829–834. https://doi.org/10.1590/S0100-736X2015001000002
2. Borsanelli, A.C., Gaetti-Jardim, Jr. E., Schweitzer, C.M., Viora, L., Busin, V., Riggio, M.P., & Dutra, I.S. (2017). Black-pigmented anaerobic bacteria associated with ovine periodontitis. Veterinary Microbiology, 203, 271–274. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2017.03.032
3. Borsanelli, A.C., Athayde, F.R.F., Saraiva, J.R., Riggio, M.P., & Dutra, I.S. (2023). Dysbiosis and predicted functions of the dental biofilm of dairy goats with periodontitis. Host Microbe Interactions, 86, 687–698. https://doi.org/10.1007/s00248-022-02062-0
4. Borsanelli, A.C., Athayde, F.R.F., Riggio, M.P., Brandt, B.W., Rocha, F.I., Jesus, E.C., Gaetti-Jardim, E.Jr., Schweitzer, C.M., & Dutra, I.S. (2022). Dysbiosis and predicted function of dental and ruminal microbiome associated with bovine periodontitis. Original research, 13. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.936021
5. Borsanelli, A.C., Lappin, D.F., Viora, L., Bennett, D., Dutra, I.S., Brandt, B.W., & Riggio, M.P. (2018). Microbiomes associated with bovine periodontitis and oral health. Veterinary Microbiology, 218. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2018.03.016
6. Borsanelli, A.C., Viora, L., Parkin, T., Lappin, D.F., Bennett, D., King, G., Dutra, I.S., & Riggio, M.P. (2021). Risk factors for bovine periodontal disease – a preliminary study. Аnimal, 15(2). https://doi.org/10.1016/j.animal.2020.100121
7. Gaetti-Jardim, Jr. E., Fardin, A.C., Gaetti-Jardim, E.C., de Castro, A. L., Schweitzer, C.M., & Avila-Campos, M.J. (2010). Microbiota associated with chronic osteolyelitis of the jaws. Brazilian Journal of Microbiology, 41, 1056-1064. https://doi.org/10.1590/s1517-838220100004000025
8. Grzeczka, A., Lech, M., Wozniak, G., Graczyk, S., Kordowitzki, P., Olejnik, M., Gehrke, M., & Jaśkowski, J.M. (2023). Periodontitis disease in farmed ruminants-current state of research. International Journal of Molecular Sciences, 24(11), 9763. https://doi.org/10.3390/ijms24119763
9. Hajishengallis, G. (2015). Periodontitis: from microbial immune subversion to systemic inflammation. Nature Reviews Immunology, 15, 30-44. https://doi.org/10.1038/nri3785
10. Hajishengallis, G., Lamont, R.J., & Graves, D.T. (2015). The enduring importance of animals models in understanding periodontal disease. Virulence, 6(3), 229-235 https://doi.org/10.4161/21505594.2014.990806
11. Jaramillo, A., Arce, R.M., Herrera, D., Betancourth, M., Botero, E.J., & Contreras, A. (2005). Clinical and microbiological characterization of periodontal abscesses. Journal of Clinical Periodontology, 32, 1213-1218. https://doi.org/10.1111/j.1600-051x.2005.00839.x
12. Kohei, N., Beck, C.A., Rosenberg, A.F., Kates, S.L., Schwarz, E.M., & Daiss, J.L. (2015). A diagnostic serum antibody test for patients with Staphylococcus aureus osteomyelitis. Clinical Orthopaedics and Related Research, 473(9), 2735-2749. https://doi.org/10.1007/s11999-015-4354-2
13. González-Martín, M. Silva, V., Poeta, P., Corbera, J.A., & Tejedor-Junco, M.T. (2022). Microbiological aspects of osteomyelitis in veterinary medicine: drawing parallels to the infection in human medicine. Veterinary quarterly, 42(1), 1-11. https://doi.org/10.1080/01652176.2021.2022244
14. Nuss, K. Malbon, A. J., Braun, U., Ringer, S., Muggli, E., Kircher, P., & Willmitzer, F. (2015). Osteomyelitis of the hyoid bones in two calves. Acta Veterinaria Scandinavica, 57(52). https://doi.org/10.1186/s13028-015-0147-6
15. Kennedy, R., Lappin, D.F., Dixon, P.M., Buijs, M.J., Zaura, E., Crielaard, W., O'Donnell, L., Bennett, D., Brandt, B.W., & Riggio, M.P. (2016). The microbiome associated with equine periodontitis and oral health. Veterinary Research, 47(49). https://doi.org/10.1186/s13567-016-0333-1
16. Reif, U., Lischer, C. J., Steiner, A., Flückiger, M.A., & Auer, J.A. (2000). Long-term results of bovine mandibular fractures involving the molar teeth. Affiliations Expand, 29(4), 335-40. https://doi.org/10.1053/jvet.2000.5603
17. Sela, M.N. (2001). Role of Treponema denticola in periodontal diseases. Critical Reviews in Oral Biology & Medicine, 12(5), 399-413. https://doi.org/10.1177/10454411010120050301
18. Tedla, M., Mehari, F., & Kebede, H. (2018). A cross-sectional survey and follow up study on major dairy health problems in large and small scale urban farms in Mekelle, Tigray, Ethiopia. BMC Research Notes, 11, 236. https://doi.org/10.1186/s13104-018-3347-0
19. Tedla, M., & Gebreselassie, M. (2018). Estimating the proportion of clinically diagnosed infectious and non-infectious animal diseases in Ganta Afeshum woreda, Eastern Tigray zone, Ethiopia. BMC Research Notes, 11, 29. https://doi.org/10.1186/s13104-018-3158-3
20. Zimmermann, I., Hässig, M., & Nuss, K. (2022). Mandibular fractures in cattle ‒ a review of 108 cases. Schweizer Archiv für Tierheilkunde, 164(9), 609-622. https://doi.org/10.17236/sat00364