Біологічні особливості свиней різного типу продуктивності в ранньому онтогенезі

A. M. Khokhlov; D. I. Baranovsky; I. I. Goncharova; A. S. Fedyaeva; V. V. Karyaka

doi:10.31890/vttp.2020.06.19

A. M. Khokhlov Харківська державна зооветеринарна академія, Україна https://orcid.org/0000-0002-3265-1874
D. I. Baranovsky Харківська державна зооветеринарна академія, Україна https://orcid.org/0000-0002-2104-995X
I. I. Goncharova Харківська державна зооветеринарна академія, Україна http://orcid.org/0000-0003-0190-7803
A. S. Fedyaeva Харківська державна зооветеринарна академія, Україна http://orcid.org/0000-0003-1227-9873
V. V. Karyaka Харківська державна зооветеринарна академія, Україна https://orcid.org/0000-0003-2245-2246

DOI: https://doi.org/10.31890/vttp.2020.06.19

Ключові слова: порода, селекція, генотип, генофонд, онтогенез

Анотація

Морфогенетичний період є найбільш важливим періодом онтогенезу, періодом найвищої активності генів, які забезпечують фундаментальну закладку і розвиток основних систем організму. Селекційні зміни завжди починаються зі змін генетичних, які впливають на процес розвитку, реалізуються у фенотипі. Потім, уже на рівні фенотипу вступає в дію відбір. Шлях від гену до ознаки – основна проблема біології розвитку.

Вивчення поставлених питань проведено на плодах, ембріонах і новонароджених поросятах великої білої, ландрас та миргородської породи.

Основними ознаками, які характеризують особливості морфогенетичного періоду онтогенезу, вважають показники живої маси, ріст, розвиток тілобудови, внутрішніх органів, кістяка та м’язової тканини.

Роль крові в організмі дуже різноманітна. Основні показники, за якими ведеться вивчення властивостей крові, її загальна кількість, склад (кількість еритроцитів і лейкоцитів, вміст гемоглобіну, білка, його фракцій). У плодів маток породи ландрас і велика біла поряд із високою плодючістю виявлена більша кількість формених елементів крові і висока концентрація білку у плазмі крові у порівнянні з плодами і новонародженими поросятами миргородської породи.

Завантаження

##plugins.generic.usageStats.noStats##

Посилання

Berezovskij, N. D., & Vashenko, P.A. (2019). Selekciya zavodskogo tipa svinej v krupnoj beloj porode. SVINARSTVO. Mizhvidomchij naukovij zbirnik, 73, 81-90. [in Ukrainian]

Chang, F., Fang, R., Wang, M., Zhao, X., Chang, W., Zhang, Z. H., Li, N., & Meng, Q. Y. (2017). The transgenic expression of human follistatin-344 increases skeletal muscle mass in pigs. TRANSGENIC RESEARCH, 26 (1), 25-36. DOI: 10.1007/s11248-016-9985-x.

Dang-Nguyen, T., Haraguchi, S., Akagi, S., Somfai, T., Kaneda, M., Watanabe, S., Kikuchi, K., Tajima, A., & Nagai, T. (2013). Restoration of telomere length in cloned pig embryos during early embryogenesis is not dependent on telomere length and type of donor cells. REPRODUCTION FERTILITY AND DEVELOPMENT, 25 (1), 166-166. DOI: 10.1071/RDv25n1Ab36.

Dong-Kyung, L., Kwang-Hwan, C., Jae Yeon, H., Jong-Nam, O., Seung-Hun, K., & Chang-Kyu L. (2019). Stearoyl-coenzyme A desaturase 1 is required for lipid droplet formation in pig embryo. REPRODUCTION, 157(3), 235-243. DOI: 10.1530/REP-18-0556.

Hohlov, A. M., Baranovskij, D. I., & Getmanec, O. M. (2017). Monitoring porodoobrazovatelnogo processa v svinovodstve. PROBLEMI ZOONZHENERIYI TA VETERINARNOYI MEDICINI, 33(1), 94-104. [in Ukrainian]

Hou, X. H., Tang, Z. L., Liu, H. L., Wang, N., Ju, H. M., & Li, K. (2012). Discovery of MicroRNAs Associated with Myogenesis by Deep Sequencing of Serial Developmental Skeletal Muscles in Pigs. PLOS ONE, 7(12), е52123. DOI:10.1371/journal.pone.0052123.

Hua, C. J., Wang, Z. S., Zhang, J. B., Peng, X., Hou, X. H., Yang, Y. L., Li, K., & Tang, Z. L. (2016). SMAD7, an antagonist of TGF-beta signaling, is a candidate of prenatal skeletal muscle development and weaning weight in pigs. MOLECULAR BIOLOGY REPORTS, 43(4), 241-251. DOI: 10.1007/s11033-016-3960-8.

Huiying, Z., Dawei, Y., Xuguang, Du., Jing, W., Lei, C., Yangyang, W., Huitao, X., & Yunxuan, Z. (2019). No imprinted XIST expression in pigs: biallelic XIST expression in early embryos and random X inactivation in placentas. CELLULAR AND MOLECULAR LIFE SCIENCES, 76(22), 4525-4538. DOI: 10.1007/s00018-019-03123-3.

Jiao1, Y., Li, X., & Kim, I. (2020). Changes in growth performance, nutrient digestibility, immune blood profiles, fecal microbial and fecal gas emission of growing pigs in response to zinc aspartic acid chelate. ASIAN-AUSTRALASIAN JOURNAL OF ANIMAL SCIENCES, 33(4), 597-604. DOI: 10.5713/ajas.19.0057.

Kouba, M., & Bonneau, M. (2009). Compared development of intermuscular and subcutaneous fat in carcass and primal cuts of growing pigs from 30 to 140 kg body weight. MEAT SCIENCE, 81(1), 270-274. DOI: 10.1016/j.meatsci.2008.08.001.

Landgraf, S., Susenbeth, A., Knap, P. W., Looft, H., Plastow, G. S., Kalm, E., & Roehe, R. (2006). Developments of carcass cuts, organs, body tissues and chemical body composition during growth of pigs. ANIMAL SCIENCE, 82 (6), 889-899. DOI: 10.1017/ASC2006097.

Lu, L., Jansenb, C, Bolhuisa, E., Artsa, J., Kempa, B., & Parmentiera, H. (2020). Early and later life environmental enrichment affect specific antibody responses and blood leukocyte subpopulations in pigs. PHYSIOLOGY & BEHAVIOR, 217. DOI:10.1016/j.physbeh.2020.112799.

Martins, J. M., Fialho, R., Albuquerque, A., Neves, J., & Freitas, A. (2020). Nunes, JT.; Charneca, R. Growth, blood, carcass and meat quality traits from local pig breeds and their crosses. ANIMAL, 14(3), 636-647. DOI: 10.1017/S1751731119002222.

Moreno, I., Ladero, L., & Cava, R. (2020). Effect of the Iberian pig rearing system on blood plasma antioxidant status and oxidative stress biomarkers. LIVESTOCK SCIENCE, 235, UNSP 104006. DOI: 10.1016/j.livsci.2020.104006.

Prather, R., Redel, B., Whitworth K., & Zhao, M. (2014). Genomic Profiling to Improve Embryogenesis in the Pig. ANIMAL REPRODUCTION SCIENCE, 149 (1-2), 39-45. DOI: 10.1016/j.anireprosci.2014.04.017.

Schutkowski, A., Kluge, H., Trotz, P., Hause, G., Konig, B., & Wensch-Dorendorf, M., Stangl, G. I. (2019). Impact of a high-protein diet during lactation on milk composition and offspring in a pig model. EUROPEAN JOURNAL OF NUTRITION, 58(8), 3241-3253. DOI: 10.1007/s00394-018-1867-y.

Shena, C., Tonga, X., Chena, R., Gaoa, S., Liua, X., Schinckelb, A., Lia, Y., Xua, F., & Zhoua, B. (2020). Identifying blood-based biomarkers associated with aggression in weaned pigs after mixing. APPLIED ANIMAL BEHAVIOUR SCIENCE, 224. DOI: 10.1016/j.applanim.2019.104927.

Whitworth, K., Springer, G., Forrester, J, Spollen, W., Ries, J., Lamberson, W., Bivens, N., Murphy, C., Mathialigan, N., & Green, J. (2014). Developmental expression of 2489 gene clusters during pig embryogenesis: an expressed sequence tag project. BIOLOGY OF REPRODUCTION, 71 (4), 1230-1243. DOI:10.1095/biolreprod.104.030239.

Zhang, J., Guo, W., Shen, L., Liu, Q., Deng, X., Hu, X., & Li, N. (2012). Development of a Porcine cDNA Microarray: Analysis of Clenbuterol Responding Genes in Pig (Sus scrofa) Internal Organs. JOURNAL OF INTEGRATIVE AGRICULTURE, 11(11), 1877-1883. DOI: 10.1016/S2095-3119(12)60193-2.

Zhao-Bo, L., Qi-Rong, L., Mei-Fu, X., Sheng-Zhong, H., Jun-Xia, W., Qing, G., Yong-Gyu, C., Song-Shan, J., Jin-Dan, K., & Xi-Jun, Y. (2019). Comparison of internal organs between myostatin mutant and wild-type piglets. JOURNAL OF THE SCIENCE OF FOOD AND AGRICULTURE, 99 (15), 6788-6795. DOI: 10.1002/jsfa.9962.