Поширення та особливості клінічного прояву ринотрахеїту котів у м. Харкові

R. V. Severyn; I. М. Ivanchenko; A. M. Hontar; V. А. Ruban

doi:10.31890/vttp.2020.05.29

R. V. Severyn Харківська державна зооветеринарна академія, Харків, Україна https://orcid.org/0000-0003-2217-8582
I. М. Ivanchenko Харківська державна зооветеринарна академія, Харків, Україна https://orcid.org/0000-0001-7465-4822
A. M. Hontar Харківська державна зооветеринарна академія, Харків, Україна https://orcid.org/0000-0003-0504-8663
V. А. Ruban Харківська державна зооветеринарна академія, Харків, Україна https://orcid.org/0000-0001-9184-4695

DOI: https://doi.org/10.31890/vttp.2020.05.29

Ключові слова: коти, респіраторні хвороби, герпесвірусна інфекція, ринотрахеїт котів

Анотація

Нозологічний профіль гострих респіраторних хвороб котів у м. Харкові формується переважно 3 нозологічними одиницями збудників. В 24 % випадків клінічні прояви ринотрахеїту у котів були спричинені асоціацією двох чи трьох патогенів (каліцивірусу, герпесвірусу та хламідії). Частка герпесвірусної моноінфекції складала 31,1 %. Ринотрахеїт перебігав як у респіраторній (42,6 % від досліджених), так і у кон’юнктивальній (34,8 %), інколи (14,7 %) – у генітальній формах. Основними шляхами виділення збудників ринотрахеїту до навколишнього середовища було виділення секрету з носової порожнини тварин, де їх було встановлено у кількості 2,03±0,12 lg ТЦД _50/мл – 2,05±0,16 lg ТЦД _50/мл. (відповідно за віковими групами) навіть за латентної форми інфекції. Частота встановлення збудників у тварин з клінічним проявом інфекції за допомогою ПЛР склала 38,4 %, у тому числі в 23,8 % випадків – герпесвірусу в моноваріанті.

Завантаження

##plugins.generic.usageStats.noStats##

Посилання

Bannasch, M. J., & Foley, J. E. (2005). Epidemiologic evaluation of multiple respiratory pathogens in cats in animal shelters. J Feline Med Surg., 7 (2), 109-19. DOI: 10.1016/j.jfms.2004.07.004

Bergmann, M., Ballin, A., Schulz, B., Dörfelt, R., & Hartmann, K. (2019). [Treatment of acute viral feline upper respiratory tract infections]. Tierarztl Prax Ausg K Kleintiere Heimtiere, 47(2), 98-109. DOI: 10.1055/a-0870-0801

Chen, T., Zhou, X., Qi, Y., Mi, L., Sun, X., Zhang, S. … Hu, R. (2019).Feline herpesvirus vectored-rabies vaccine in cats: A dualprotection. Vaccine, 10, 37 (16), 2224 - 2231. DOI: 10.1016 /j.vaccine.2019.03.008

Contreras, E. T., Olea-Popelka, F., Wheat, W., Dow, S., Hawley, J., & Lappin, M. R. (2019). Evaluation of liposome toll-like receptor ligand complexes for non-specific mucosal immunoprotection from feline herpesvirus-1 infection. Vet Intern Med., 33(2), 831-837. DOI: 10.1111 / jvim.15427

Dinnage, J. D., Scarlett, J. M., & Richards, J. R. (2009). Descriptive epidemiology of feline upper respiratory tract disease in an animal shelter. J Feline Med Surg.,11, 816‐825. DOI: 10.1016/j.jfms.2009.03.001

Gould, D. (2011). Feline herpesvirus-1: ocular manifestations, diagnosis and treatment options. J Feline Med Surg., 13(5), 333-346. DOI: 10.1016/j.jfms.2011.03.010

Helps, C. R., Lait, P., Damhuis, A., Björnehammar, U., Bolta, D., Brovida, C., & Graat, E. A. (2005). Factors associated with upper respiratory tract disease caused by feline herpesvirus, feline calicivirus, Chlamydophilafelis and Bordetella bronchiseptica in cats: experience from 218 European catteries. Vet Rec., 21, 156(21), 669-73. DOI: 10.1136/vr.156.21.669

Lappin, M. R., Blondeau, J., Boothe, D., Breitschwerdt, E. B., Guardabassi, L., Lloyd, D. H. … Weese, J. S. (2017). Antimicrobial use Guidelines for Treatment of Respiratory Tract Disease in Dogs and Cats: Antimicrobial Guidelines Working Group of the International Society for Companion Animal Infectious Diseases.J Vet Intern Med., 31(2), 279-294. DOI: 10.1111/jvim.14627

Legendre, A. M., Kuritz, T., Heidel, R. E., & Baylor, V. M. (2017). Polyprenyl Immunostimulant in Feline Rhinotracheitis: Randomized Placebo-Controlled Experimental and Field Safety Studies. Front Vet Sci., 27(4), 24. DOI: 10.3389/fvets.2017.00024

Litster, A., Wu, C. C., & Leutenegger, C. M. (2015). Detection of feline upper respiratory tract disease pathogens using a commercially available real-time PCR test. Vet J., 206(2), 149-53. DOI: 10.1016/j.tvjl.2015.08.001

Malik, R., Lessels, N. S., Webb, S., Meek, M., Graham, P.G., Vitale, C., Norris J.M., & Power, H. (2009). Treatment of feline herpesvirus-1 associated disease in cats with famciclovir and related drugs. J Feline Med Surg., 11(1), 40-8. DOI: 10.1016/j.jfms.2008.11.012

Reagan, K. L., Hawley, J. R., & Lappin, M. R. (2014). Concurrent administration of an intranasal vaccine containing feline herpesvirus-1 (FHV-1) with a parenteral vaccine containing FHV-1 is superior to parenteral vaccination alone in an acute FHV-1 challenge model. Vet J., 201(2), 202-206. DOI: 10.1016 / j.tvjl.2014.05.003

Spiri, A. M., Meli, M. L., Riond, B., Herbert, I., Hosie, M. J., & Hofmann-Lehmann, R. (2019). Environmental Contamination and Hygienic Measures After Feline Calicivirus Field Strain Infections of Cats in a Research Facility. Viruses., 17,11(10). DOI: 10.3390/v11100958

Summers, S. C., Ruch-Gallie, R., Hawley, J. R., & Lappin, M. R. (2017). Effect of modified live or inactivated feline herpesvirus-1 parenteral vaccines on clinical and laboratory findings following viral challenge. J Feline Med Surg., 19(8), 824-830. DOI: 10.1177/1098612X16659333

Sykes, J. E., Allen, J. L., Studdert, V. P., & Browning, G. F. (2001). Detection of feline calicivirus, feline herpesvirus 1 and Chlamydia psittaci mucosal swabs by multiplex RT-PCR/PCR.Vet Microbiol., 26, 81(2), 95-108. DOI: 10.1016 /s0378-1135 (01) 00340-6

Tan, Y., Dong, G., Niu, J., Guo, Y., Yi, S., Sun, M., Wang, K., & Hu, G. (2019). Development of an indirect ELISA based on glycoprotein B gene for detecting of Feline herpesvirus type 1. PolJVetSci., 22(3), 631-633. DOI: 10.24425/pjvs.2019.129971

Tan, Y., Dong, G., Xu, H., Niu, J., Lu, W., Wang, K., & Hu, G. (2020). Development of a cross-priming isothermal amplification assay based on the glycoprotein B gene for instant and rapid detection of feline herpesvirus type 1. ArchVirol., 165(3), 743-747. DOI: 10.1007/s00705-020-04526-5

Van Brussel, K., Carrai, M., Lin, C., Kelman, M., Setyo, L., Aberdein, D., & Barrs, V. R. (2019). Distinct Lineages of Feline Parvovirus Associated with Epizootic Outbreaks in Australia, New Zealand and the United Arab Emirates. Viruses., 13, 11(12). DOI: 10.3390/v11121155

Wang, J., Liu, L., Wang, J., Sun, X., & Yuan, W. (2017). Recombinase Polymerase Amplification Assay-A Simple, Fast and Cost-Effective Alternative to Real Time PCR for Specific Detection of Feline Herpesvirus-1.PLoS One, 12(1), e0166903. DOI:10.1371 / journal.pone.0166903

Wheat, W., Chow, L., Coy, J., Contreras, E., Lappin, M., & Dow, S. (2019). Activation of upper respiratory tract mucosal innate immune responses in cats by liposomal toll-like receptor ligand complexes delivered topically. J Vet Intern Med., 33(2), 838-845. DOI: 10.1111/2Fjvim.15426